蛋白分析FAQ彙總
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詳細描述了從脊髓組織中提取、淨化和準備蛋白質的過程，為質譜分析做好準備。
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• 重複做了三次質譜實驗，得到的三次資料中出現定量值為0，應該如何分析呢？
當在質譜實驗中得到三次資料中出現定量值為0時，可以考慮以下幾個方面進行分析： 1.檢查實驗條件和樣品處理： 確保實驗條件的穩定性，包括儀器的校準和質控樣品的使用。 檢查樣品的處理過程，確保沒有發生樣品損失或降解。 2.檢查質譜儀器和方法： 確保質譜儀器的效能正常，例如檢查離子源、質
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當進行免疫共沉澱實驗時，是否將抗體過夜取決於實驗的具體要求和抗體的特性。下面是一些關鍵因素需要考慮的： 1.抗體穩定性：不同的抗體具有不同的穩定性。有些抗體在過夜的條件下可能會降解或失去活性。因此，在選擇是否將抗體過夜之前，需要對抗體的穩定性進行評估。 2.抗體濃度：過夜的時間越長，抗體
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免疫共沉澱（co-immunoprecipitation）是一種常用於檢測和分離特定蛋白質與其相互作用的蛋白質複合物的實驗技術。這種技術在生物藥物研發和生物科技領域中被廣泛應用，因為它可以幫助我們瞭解蛋白質相互作用的機制，從而揭示疾病發生和發展的過程。 免疫共沉澱的基本原理是利用抗體的高度
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設立陽性對照是coIP方法中的重要步驟，透過選擇已知相互作用的蛋白質對，並進行免疫沉澱和免疫印跡分析等實驗，可以驗證實驗的可靠性和準確性。同時，還需要進行陰性對照實驗來排除非特異性的結合和假陽性結果。 陽性對照的設立一般遵循以下的準則： 1.已知的蛋白質互作對：選擇一個在文獻中已經報道過的
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當我們需要確定蛋白質樣品的純度時，一種常用的方法是使用尺寸排阻色譜（Size Exclusion Chromatography，SEC）結合高效液相色譜（High Performance Liquid Chromatography，HPLC）進行檢測。以下是關於如何進行SEC-HPLC檢測蛋
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當進行 pull down 實驗時，我們通常是用來研究蛋白質間的相互作用。在該實驗中，我們使用特定的抗體或親和劑來捕獲目標蛋白質，然後透過蛋白質分析技術來檢測和鑑定與目標蛋白質相互作用的其他蛋白質。下面是關於如何解讀 pull down 實驗結果的一些步驟和注意事項： 1.驗證實驗條件：在
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當進行pull down實驗時，設定對照組是非常重要的，它可以幫助我們確定實驗結果的特異性和可靠性。下面是關於如何設定對照組的一些建議： 背景對照組（Background control）：這是最基本的對照組，用於檢測非特異性結合。在這個對照組中，我們使用與目標蛋白無關的抗體或非特異性I
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• 蛋白質分離純化方面，AKTA快速蛋白分離系統和HPLC 的差別？
AKTA和HPLC都是用於蛋白質和其他生物大分子分離純化的液相色譜技術，但它們在設計、應用和功能上有一些明顯的差異： 1.主要用途： AKTA：AKTA系統，由GE Healthcare (現在是Cytiva) 生產，主要設計用於生物分子，特別是蛋白質的純化。它通常用於親和色譜、離子交換色
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GST-pull down和CoIP是常用的蛋白質相互作用研究技術，它們在生物科技和藥物研發領域中起著重要的作用。GST-pull down和CoIP的主要區別如下： 1.原理： GST-pull down：GST-pull down是一種親和純化技術，利用谷胱甘肽S轉移酶（GST）標記
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