請問O糖基化WB抗體檢測的protocol?
O-糖基化Western Blot(WB)抗體檢測的基本步驟如下:
1.樣本準備:
收集並製備含有目標蛋白的細胞或組織樣本。使用適當的裂解緩衝液裂解樣本,然後透過離心去除不可溶物。
2.蛋白濃度測定:
使用BCA蛋白測定試劑盒或類似方法,測定樣本中的蛋白濃度。
3.SDS-PAGE電泳:
根據蛋白的分子量,選擇合適的聚丙烯醯胺凝膠濃度。載入等量蛋白到凝膠上,進行SDS-PAGE電泳分離。
4.轉膜:
使用溼轉或半乾轉的方法,將蛋白從凝膠轉移到聚偏氟乙烯(PVDF)或硝酸纖維素(NC)膜上。
5.封閉:
使用5%脫脂牛奶或BSA溶液封閉膜,以防止非特異性結合。
6.一抗孵育:
用含有O-糖基化特異性抗體的稀釋液(通常是TBST,含有0.1% Tween 20和1-5%脫脂牛奶或BSA)覆蓋膜,通常在4°C下過夜孵育。
7.清洗:
使用TBST清洗膜,以去除未結合的抗體。
8.二抗孵育:
使用與一抗物種相對應的HRP或其他標記的二抗孵育膜,通常在室溫下進行1-2小時。
9.再次清洗:
再次使用TBST清洗膜。
10.檢測:
使用化學發光底物進行訊號檢測,根據需要進行曝光和成像。
注意:這是一個通用的步驟概述,具體細節(如抗體稀釋比例、孵育時間等)需根據實驗具體情況進行調整。
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