怎樣用Western blot檢測目標蛋白質?
- 收集細胞或組織樣品,並將其裂解以釋放蛋白質。可以使用細胞裂解緩衝液或RIPA緩衝液等。
- 新增蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑到裂解液中,以防止蛋白質的降解和磷酸化。
- 使用超聲波或離心等方法,使細胞或組織完全裂解,並獲得清晰的裂解液。
- 使用BCA法、Lowry法或Bradford法等方法,對裂解液中的蛋白質進行定量。
- 根據需要,將蛋白質樣品稀釋至相同濃度。
- 將蛋白質樣品加入含有還原劑和SDS的樣品緩衝液中。
- 加熱樣品混合物,使蛋白質變性並解開二級結構。
- 將樣品載入到聚丙烯醯胺凝膠(SDS-PAGE)孔中,並進行電泳分離。
- 根據需要,可以使用不同濃度的凝膠和電泳條件來分離不同大小的蛋白質。
- 將分離的蛋白質從凝膠轉移到聚乙烯二醇膜(PVDF)或硝酸纖維素膜(NC)上。
- 使用溼式轉移或半乾式轉移方法,將蛋白質從凝膠中遷移到膜上。
- 確保轉移條件(如電流和時間)適當,以確保蛋白質的完整轉移。
- 使用非特異性蛋白質(如牛血清蛋白或BSA)阻斷膜上未被轉移的位點,以減少非特異性結合。
- 將膜孵育在含有目標蛋白質特異性抗體的抗體緩衝液中,以實現抗體與目標蛋白質的特異性結合。
- 孵育時間和溫度應根據抗體和目標蛋白質的特性進行最佳化。
- 使用與目標蛋白質特異性抗體結合的二級抗體,如HRP(辣根過氧化物酶)標記的抗兔IgG或抗鼠IgG。
- 孵育膜與二級抗體,以實現二級抗體與一級抗體的特異性結合。
- 使用化學發光或染色方法,檢測二級抗體與目標蛋白質的結合,並獲得視覺化的結果。
- 使用影象分析軟體,如ImageJ或Quantity One,對Western blot影象進行定量分析。
- 透過比較目標蛋白質的帶強度,可以確定其在不同樣品中的表達水平。
- 使用內參蛋白質(如β-actin或GAPDH)作為載入控制,以校正樣品之間的差異。
Western blot透過將蛋白質樣品經過SDS-PAGE電泳和膜轉移,然後使用特異性抗體進行結合和檢測,可以定量分析目標蛋白質的表達水平。Western blot實驗的大致步驟包括樣品製備、蛋白質定量、電泳分離、膜轉移、抗體結合和檢測等,以下是一些詳細步驟和注意事項:
1.樣品製備:
2.蛋白質定量:
3.SDS-PAGE電泳:
4.蛋白轉移:
5.阻斷和抗體結合:
6.二級抗體結合和檢測:
7.資料分析:
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